猪瘟蓝耳口蹄疫CSFV/PRRSV-U/FMDV-U荧光PCR说明书
【产品名称】
商品名称:猪瘟病毒/猪蓝耳病病毒通用型/口蹄疫病毒通用型(CSFV/PRRSV-U/FMDV-U)核酸检测试剂盒(实时荧光-PCR 法)
Name :Classical swine fever virus / swine ear disease virus universal / foot-and-mouth disease virus universal (CSFV/PRRSV-U/FMDV-U) nucleic acid detection kit (real-time fluorescence -PCR)
【包装规格】48T/盒
【预期用途】
口蹄疫病毒(FMDV)属小 RNA 病毒科属,是小的动物病毒之一,在世界范围广泛分布,其中,O、A、C 型 FMDV 的毒力和抗原性均易发生变易,几乎遍布亚、非、拉、欧各洲;AsiaⅠ型主要分布在亚洲;SATI、SAT2、SAT3 型主要分布在非洲[1-2]。口蹄疫病毒血清型复杂多变,为检测带来了较大的难度[3]。
本试剂盒适用于检测口蹄疫易感动物的水泡皮及水泡液、O/P 液等标本中口蹄疫病毒通用型 RNA,适用于口蹄疫病毒通用型感染的辅助诊断。
【检验原理】
本试剂盒对口蹄疫病毒通用型特异核酸序列设计引物和探针,用一步法荧光RT-PCR 技术对口蹄疫病毒通用型 RNA 进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
【试剂组成】
名 称 规 格
酶液 50μL×1 管
FMDV-U 反应液 1.0mL×1 管
FMDV-U 阳性质控品 50μL ×1 管
阴性质控品 250μL ×1 管
注:
1)不同批号试剂不能混用。
2)试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。
【储存条件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】
ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】
病死或扑杀动物,取水泡皮及水泡液;待检活动物,取 O/P 液 2~3mL。
【保存和运输】
上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。
【使用方法】
1.样品处理(样本处理区)
1.1样本前处理
水泡皮样品:称取水泡皮 0.5g 于研磨器中研磨,加入生理盐水继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;OP 液或水泡液样品,直接取 100μL 置于 1.5mL 灭菌离心管中。
1.2RNA 提取
推荐采用南昌垒佳数码科技有限公司生产的RNA 提取试剂盒(离心柱提取法),请按照试剂盒说明书进行操作。
2.试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂 FMDV-U 反应液 酶液
用量 20μL 1μL
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。
3.加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的 RNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
4.PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择: 检测通道
(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
4.3推荐循环参数设置:
步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
1 1 cycle 42℃ 20min 否
2 1 cycle 95℃ 10min 否
3 40 cycles 94℃ 15sec 否
55℃ 30sec 是
5.结果分析判定
5.1结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、
stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
6.质控标准
阴性质控品:无明显扩增曲线丏无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,丏 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
【参考文献】
[1]Mulle JD,McEachern JA,Bossart KN,et al. Serotype-independent detection of foot-and-mouth disease virus [J]. J Virol Methods [J].2008,151(1):146-153.
[2]吴绍强.亚欧型及南非型口蹄疫一步法多重荧光 RT-PCR 检测方法建立[J]. 中国农业科学,2010,43(14):3019-3026.
[3]Mason PW,Grubman MJ,Baxt B. Molecular basis of pathogenesis of FMDV [J].Virus Res,2003,91(1):9-32.
公司优势:
1)质量:我司提供的的试剂为世界
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